安樂死執行的時機點在實驗終止、因研究所需提供血液或其他組織器官、當動物疼痛及窘迫程度超過預期程度以上、因動物健康及福祉考量及不適合繼續繁殖時實施。 小鼠心臟採血 而在安樂死執行之前，操作人員需有專業的教育訓練，其操作安樂死計畫必須有完整的許可證明，並有監督單位的同意方可執行。 頸椎脫垂犧牲法只適用於小動物，頸椎脫垂犧牲法也只適用體重少於100g的嚙齒類動物，以及體重少於1kg的兔子及鳥類；斷頭犧牲法只適用於哺乳類動物的胎兒及胚胎、體重少於50g的鳥類。 許多的方法會直接影響血液生化數值，例如多種麻醉藥。
- 采血结束后使用无菌干棉球压迫止血。
- 这项技术应由训练良好的工 作人员来操作，而且只能用动物的一只眼睛。
- 大多数生化分析最好的时间是收集后2小时内在室温下进行分析。
- 结果表明，这些参数回到基线水平所用的时间相当不同，在 15%~20%的实验组，一些参数(MCV，RDW)在 29 天后仍旧没有回到基线水平。
采血时要注意一只成年小鼠的循环血量大约是1.5~2.5ml，大约体重的 6~8%。 在对营养状况良好的小鼠进行采血时，单次采血量最多可以到达循环血量的10%，这是避免出现不良反应的最大值。 小鼠心臟採血2025 采血之后应该给予温热的等渗溶液补充，可以在2~3个星期内恢复原有的水平。 在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定,如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。 单次采血不超过动物总血量的15%时，可在3~4周后重复采血。 长期多次采 血每24h不应超过总血量的1%(0.6 ml/kg/d)。
小鼠心臟採血: 小鼠行为实验
用连有7号针头的注射器，针头平行血管向头部刺入血管。 由于此静脉在皮下易于滑动，针刺时除用左手固定好血管外，刺入要准确。 结果表明，这些参数回到基线水平所用的时间相当不同，在 15%~20%的实验组，一些参数(MCV，RDW)在 29 小鼠心臟採血2025 天后仍旧没有回到基线水平。
采集次数和(或)采血量过多则引 起贫血。 (一) 替代 (Replacement)：是指直接替換或避免在其他情況下使用的實驗中使用動物的技術或方法。 英國國家實驗動物3R中心 (NC3Rs) 為在動物研究和實驗中致力於推廣替代、減少和精緻化之科學組織。 NC3Rs與國內外生命科學領域的學者及組織共同合作，包括學術界、製藥、化學、研究資助者及監督機構。 小鼠心臟採血2025 並藉由研究資金及早期專業發展，支持科學界研究對3Rs的承諾，鼓勵開放式創新及3R技術的商業化，並且激勵政策、法規和慣例的變革。 血液必须在采血时或采血后立即与抗凝血剂充分混合。
小鼠心臟採血: 大鼠炎症法
将小鼠固定在左手中，在小鼠头部下颌部准确把握颌下静脉丛血管位置,血管位于下颌骨后方咬肌边缘。 酒精棉球擦拭采血部位消毒后，将灭菌注射针头迅速刺入颌下静脉丛血管，刺入深度约为3mm，血液即流出。 小鼠心臟採血 小鼠心臟採血2025 小鼠心臟採血 采血结束，立即用灭菌干棉球压迫止血。 小鼠仰卧位固定，剪去胸前区被毛，皮肤消毒后，用左手食指在左侧第3～4肋间触摸到心搏处，右手持带有4~5号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺，当刺中心脏时，血液会自动进入注射器。
右手小指搭在拽着鼠尾的左手拇指处斜15°角缓慢进针。 适当增加内压看有无回血，若有回血则缓慢抽取所需血量，棉签按压止血。 手拇指和食指从背部抓住小鼠颈部皮肤，将小鼠头朝下，小鼠保定后将其尾巴置于50°热水中浸泡数分钟，使尾部血管充盈。
小鼠心臟採血: 小鼠灌胃具体操作
非终末采血可分为单次和多次采血，单次采血量低于动物总血量的15%对动 物不会有明显影响。 小鼠心臟採血 然而，若取血量为总血量的15%~20%时，则会出现心排血 量或血压降低。 取总血量的30%~40% 会引起缺血性休克。 若取血达40%可引 起约50%的猪和大鼠死亡。 在实验过程中减少动物的疼痛不安和获得预期实验结果一样重要。
不要进针过深，以免刺穿肌肉或碰到骨头。 血液会从入针处慢慢流出，用毛细采血管收集，并松开止血带。 采血结束后，按压伤口或使用止血剂（如硝酸银）以止血，并将小鼠放回笼内。 将小鼠麻醉后用组织剪剖开腹部，分离出腹主动脉。 一手持一次性注射器，将针头近乎平行（小于30°）刺入腹主动脉，另一手固定针头，一手缓慢抽动注射器，抽取所需量血液。 取完血后，用棉球轻压针眼处，快速拔出针头。
小鼠心臟採血: 实验操作 – 常用实验小鼠采血方法
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小鼠心臟採血: 小鼠实验室操作之花式采血
采血时与抗凝剂混合方法：用于血液收集的无菌1mL注射器可以将1mL抗凝血剂从小瓶吸入注射器，然后将全部抗凝血剂重新注回小瓶，即在采血前用抗凝血剂“灌注”采血的注射器。 小鼠心臟採血 小鼠心臟採血 在已有采血后样本的1.5mL离心管中加入不超过150μL的抗凝剂。 在相对离心力14000g下离心血样10-15分。
小鼠心臟採血: 小鼠采血（剪尾采血、摘除眼球采血、心脏采血
本文推荐的多次取样后的恢复时间，是所有大鼠采血后血量均恢复至采血前的“正常” 水平加减 10%的时间。 小鼠心臟採血 单次取样(诸如要求进行常规毒理研究)推荐不超过 15%， 因超过 15%且抽血不是很缓慢的话，可能引起低血容量性休克。 小鼠心臟採血2025 而多次少量取样则不会产生这样的急性反应。 毒理实验中血液学指标的变化非常重要，多次 采血会对这些指标发生影响，应特别注意多次采血后的恢复时间然而，药动学研究时大量采血(如 20%)会引起血液动力学变化，或许会对半衰期等参数产生影响。 如果在24小时内处死动物，可以评价消除半衰期。 孰悉評估實驗動物的整體狀態，不管是生理或心理的，對於研究人員都是必要的課題。
小鼠心臟採血: 动物采血指南
右手持采血管，将尖端与小鼠面部成45℃的夹角，沿内眦插入内眼角，滑入眼球后方，轻轻向眼底方向刺入，当感到有阻力时即旋转采血管以切开静脉丛，血液即流入采血管中。 采血结束后，拔出采血管，放松左手，使用无菌纱布块轻轻压迫眼眶帮助止血。 藉由痛苦表情表可提供研究人員更準確監測動物行為及表徵，熟悉動物的身體狀態，促使實驗操作過程更加順利。 如有想更進一步了解詳細的內容，可點擊 (圖4) 動物痛苦表情評分表 小鼠心臟採血 進入觀看。 基本方法同啮齿类动物的心脏采血。 因猪的胸部肌肉较厚，应使用心脏穿刺针。
小鼠心臟採血: 大鼠、小鼠心脏取血实验
持才血症与舌面呈10°夹角插入舌下静脉，见有回血缓慢抽取，直至采到所需血量。 正确的抓取固定小鼠，是指在不损害小鼠健康，不影响观察指标，并防止被小鼠咬伤的情况下，保证实验顺利进行。 抓取固定时既要小心仔细，不能粗暴，又要大胆敏捷。 小鼠心臟採血 小鼠性情较温顺，一般不会咬人，而且体重比较轻，比较容易抓取固定。 大多数生化分析最好的时间是收集后2小时内在室温下进行分析。 小鼠心臟採血2025 小鼠心臟採血2025 如果血清或血浆样品不能在收集后2小时内进行处理，可将样品（放在加盖的试管中）放入4℃冰箱中短期储存（1周）或放入20℃或更冷的冰箱中长期储存（1周至6个月）。
小鼠心臟採血: 小鼠皮下注射、皮内注射、肌肉注射和静脉注射
常用于少量血液采集，隐静脉采血无需麻醉，待动物固定后剃毛暴露采血点，采血针刺入采血点，即可获得血液样本。 采血结束后使用无菌干棉球压迫止血。 实验动物中最主要的模式动物小鼠，在科研和应用性研究中大量使用，动物实验中，给予动物受试物后，我们除了观察其外观和表征，可能还需要采集动物的血液或体液等进行检测，以便进一步观察动物的生理、生化指标的变化。 将小鼠麻醉后，平躺放置在实验台面上，中指、食指固定小鼠尾部，用刀片轻划小鼠尾侧静脉或尾正中动脉，待血液流出后，用移液枪吸取血液。 小鼠心臟採血 采血是动物实验中经常应用的样本采集方法之一。 小鼠采血方法种类多样，包括但不限于腹主动脉采血、眼眶静脉丛取血、摘眼采血、剪尾采血、心脏采血、断头采血、颈动静脉采血和股动静脉采血等方法。
小鼠心臟採血: 动物实验中，动物采血应该怎么做？
一般情况下，总循环血量为55~77 ml/kg 体重。 对动物的终末和非终末采血技术（如麻醉，取血体积）是有区别的，终末采血指的是以动物死亡为实验结束时采血与在清醒动物身上单次或多次采血的情况是迥然不同的。 (五) 尚有其他物種的採血方式說明，如狗、鼬、天竺鼠、倉鼠及猴子等，如有想更進一步了解詳細的內容說明，可點擊 (圖1) 各物種採血方式的資訊 進入觀看。 小鼠的循环血容量一般约为 mL / kg，动物的采血量一般与被采血动物的体重、采血频率以及采血前是否给予补液有关系，且同种动物不同采血位点的采血量一般也不相同。
小鼠心臟採血: 小鼠割（剪）尾采血法
用眼科弯镊夹取眼球并快速摘取，并使血液从眼眶内流入0.5mlEP管中。 将动物麻醉后，仰卧固定，前肢向背侧方向固定，暴露胸部，剪去左侧第3~5肋间的被毛，消毒。 一般选择胸骨左外缘1cm处，于第3~4肋间穿刺。 穿刺时，可随针头接触到心脏跳动的感觉，调整刺入方向和深度，但不能让针头在胸腔内乱晃。
小鼠心臟採血: 實驗動物筆記本
大、小鼠可从股动（静）脉、腋下动（静）脉、颈动（静）脉或腹主动脉采血。 在这些部位采血需麻醉后固定动物，然后做动（静）脉分离手术，使其暴露清楚后，用注射器沿大血管平行方向刺入，抽取所需血量。 小鼠心臟採血2025 实验中应考虑不同的采血方法对动物福利的影响，在满足“3R”原则的同时，应根据实验所需采血量选择合适的采血方法。 熟练的掌握各种采血方法的操作技能，从而获得良好的实验数据，最大程度的降低对实验结果的影响。 繁殖費：此部份不包含代養費，為代養籠加收費用。 Open 小鼠心臟採血 cage僅提供代養服務，不提供繁殖服務。
当穿刺正确时，血液自动流入注射器。 将小鼠固定好，将尾巴拉直，用酒精棉球擦拭尾巴或者用热水或者热毛巾焐热尾巴, 使尾部静脉扩张。 用左手的食指，中指，无名指及大拇指将小鼠尾巴固定。 握住1ml 注射器前面0.1ml处。